定位儀微量注射泵是固定于腦立體定位儀或者顯微操作儀上,進(jìn)行腦內(nèi)注射應(yīng)用的儀器。能小注射量達(dá)到1pl,注射流速為0.05nl/min-520ul/min的超微量注射泵。可以直接夾持0.5ul到250ul容量的微量注射器,能匹配市面上大多數(shù)廠家生產(chǎn)的微量注射器型號(hào),只需要簡(jiǎn)單地從儀器的全觸屏微電腦控制器上選擇信息庫(kù)中對(duì)應(yīng)的注射器廠家和規(guī)格,即可實(shí)現(xiàn)準(zhǔn)確體積和流速的注射或回吸操作。主控制器為全觸屏,數(shù)據(jù)和進(jìn)程動(dòng)態(tài)顯示在大顯示屏上,數(shù)據(jù)設(shè)定直觀方便;主要特色:* 注射器可以精確控制注射量及注射速度;* 因?yàn)闆](méi)有很長(zhǎng)的導(dǎo)管,注射裝置及注射器直接安裝到定位儀的縱向軸上,液體直接從注射器的微量進(jìn)樣針針頭注入設(shè)定的位置,因而不易產(chǎn)生注射誤差;* 內(nèi)置注射器數(shù)據(jù)庫(kù),可以直接選擇使用的注射器;* 觸摸屏控制器,通過(guò)觸摸屏可進(jìn)行所有操作設(shè)置;* 包含電腦控制軟件,可通過(guò)電腦控制微注射泵的工作;產(chǎn)品特點(diǎn):微量注射泵可與腦立體定位儀配套使用,能過(guò)注射器直接對(duì)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物注射,避免了采取塑料管方式產(chǎn)生的誤差;可以設(shè)定注射和吸收兩種工作方式;可注射/抽吸皮升及納升容量液體;多功能注射裝置:注該射泵可以設(shè)置1皮升注射容量;流速范圍0.05ul/min-520ul/min;可使用的注射器范圍0.5ul-250ul;微量注射泵的主要技術(shù)指標(biāo)如下:可配注射器型號(hào):1~100ul電源:220V,0.05A保險(xiǎn)管:5*20mm 微步進(jìn)電機(jī)動(dòng)力帶動(dòng)小步率:1步進(jìn)(1/2 step)大步率:400步進(jìn)/(1/2step)流速范圍:0.001-200ul/min(1-100ul注射器)尺寸:泵16.5x3x4.5cm(0.16kg) 控制器 23x15.2x7.6cm(2kg) 連接電纜180cm 安裝桿直徑8mm有兩種型號(hào)可供選擇:53311型,單通道配置,1臺(tái)主機(jī)搭配1個(gè)推進(jìn)器進(jìn)行微量注射53312型,雙通道配置,1臺(tái)主機(jī)控制2個(gè)推進(jìn)器,配合2個(gè)操作臂進(jìn)行微量注射
腦立體定位儀 通過(guò)加裝不同的 適配器,可以擴(kuò)展定位儀的功能,適應(yīng)更多的動(dòng)物種類(lèi)(多種款式的腦立體定位儀適配器可供選擇,敬請(qǐng)來(lái)電咨詢(xún))
可根據(jù)需要選擇小鼠腦立體定位儀、大鼠腦立體定位儀:
玉研儀器自主研發(fā)腦立體定位儀十四年,適用于大鼠、小鼠等實(shí)驗(yàn)動(dòng)物,經(jīng)典十字操作臂實(shí)現(xiàn)準(zhǔn)確定位,精度可達(dá)10微米,特制螺紋精密螺桿,穩(wěn)固不晃動(dòng)實(shí)現(xiàn)對(duì)特定腦區(qū)的精確定位,是神經(jīng)環(huán)路研究、神經(jīng)系統(tǒng)性疾病、神經(jīng)藥理等領(lǐng)域內(nèi)的重要研究設(shè)備,廣泛面向全國(guó)各大科研院校,醫(yī)院,高新企業(yè),藥企,醫(yī)療機(jī)構(gòu)等科研單位。大鼠腦立體定位儀、小鼠腦立體定位儀(雙臂腦立體定位儀,單臂腦立體定位儀,數(shù)顯型腦立體定位儀)(根據(jù)需求不同,有多種不同的型號(hào)可供選擇:?jiǎn)伪坌停p臂型,數(shù)顯型,數(shù)控型,敬請(qǐng)來(lái)電咨詢(xún))
輕便型:
標(biāo)準(zhǔn)型:
動(dòng)物腦立體定位儀產(chǎn)品特點(diǎn):操作靈活、簡(jiǎn)便,標(biāo)配大鼠適配器;腦立體定位儀標(biāo)尺是由激光雕刻,清晰易讀:手動(dòng)款式精確度為0.1mm,數(shù)字顯示型號(hào)精度為0.01mm;腦立體定位儀操作臂移動(dòng)范圍(上下,左右,前后):三方向移動(dòng)距離80mm;垂直方向可90度轉(zhuǎn)動(dòng),并隨時(shí)鎖定位置;擴(kuò)充能力很強(qiáng),可增加操作臂,增加注射裝置及顱鉆等;可以根據(jù)需要增加不同的固定器,用于多種動(dòng)物;腦立體定位儀具有以下優(yōu)勢(shì):
大鼠腦立體定位儀的主要構(gòu)造:數(shù)字顯示型腦立體定位儀Digital Stereotaxic Instrument 是一種可靠的多功能的設(shè)備,通過(guò)儀器的準(zhǔn)確定位,可以確保點(diǎn)擊、微管以及其它設(shè)備在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中的精確定位。數(shù)顯型腦立體定位儀主要特點(diǎn):1.適用于小鼠、新生大鼠、鳥(niǎo)類(lèi)等動(dòng)物的研究(請(qǐng)根據(jù)需求選擇合適的配置);2.無(wú)U型底座設(shè)計(jì),操作空間最大化;3.讀數(shù)精度采用游標(biāo)卡尺方式,讀數(shù)精度為10μm;4.操作臂上下、前后、左右移動(dòng)范圍可達(dá)80mm;垂直方向移動(dòng)90°可鎖。5.配有鼻子適配器、三種不同型號(hào)的耳棒等;6.三角形的導(dǎo)軌使之能夠進(jìn)行快速定位。其通用的接點(diǎn)便于實(shí)驗(yàn)者橫向或縱向移動(dòng)電極,鎖定裝置能夠?qū)㈦姌O以任何角度固定,不會(huì)滑脫。7.擴(kuò)充能力很強(qiáng),可增加操作臂、增加注射裝置及顱鉆等,也可以根據(jù)需要增加不同的固定器;8.目標(biāo)定位的調(diào)零功能:在任意一個(gè)位點(diǎn),每條軸方向上的顯示都可以歸零,這樣就可以使操作簡(jiǎn)化,閱讀方便。實(shí)際操作中,如果要定位一個(gè)特殊位點(diǎn),可以先找到參考點(diǎn),然后歸零,再移動(dòng)數(shù)顯型腦立體定位儀操作臂到希望到達(dá)的點(diǎn)上,調(diào)低電極,夾持器或微管到位點(diǎn)上即可。
小鼠及幼大鼠腦立體定位儀適配器
該小鼠適配器耳桿采用樹(shù)脂材料,對(duì)尖端進(jìn)行適合的錐度處理,能夠牢固的夾緊小鼠頭部又避免了采用不銹鋼作為耳桿對(duì)小鼠顱骨的損傷,兩側(cè)耳桿的高度和門(mén)齒夾的高度均可自由進(jìn)行調(diào)節(jié),并帶有刻度,適合不同的角度進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
多種型號(hào)可供選擇:
標(biāo)準(zhǔn)腦立體定位儀(小鼠)
雙臂標(biāo)準(zhǔn)腦立體定位儀(小鼠)
數(shù)顯標(biāo)準(zhǔn)腦立體定位儀(小鼠)
數(shù)顯雙臂標(biāo)準(zhǔn)腦立體定位儀(小鼠)
標(biāo)準(zhǔn)腦立體定位儀(大鼠)
雙臂標(biāo)準(zhǔn)腦立體定位儀(大鼠)
數(shù)顯標(biāo)準(zhǔn)腦立體定位儀(大鼠)
數(shù)顯雙臂標(biāo)準(zhǔn)腦立體定位儀(大鼠)
電動(dòng)標(biāo)準(zhǔn)腦立體定位儀(大鼠)
定位儀基座
大鼠頭部固定器
小鼠頭部固定器
SA-100系列 標(biāo)準(zhǔn)型大鼠腦立體定位儀:
SA-100系列 標(biāo)準(zhǔn)型小鼠腦立體定位儀:
SA-150系列 數(shù)顯型腦立體定位儀(大鼠)
單臂、數(shù)顯標(biāo)準(zhǔn)腦立體定位儀(小鼠)
雙臂、數(shù)顯雙臂標(biāo)準(zhǔn)腦立體定位儀(大鼠、小鼠)
腦立體定位儀相關(guān)配件及可選配件:
根據(jù)需要,還可以選擇頭部固定器:
大鼠腦部固定器適用于腦部固定的操作實(shí)驗(yàn), 同時(shí)配合氣體麻醉使用。非常適用于顯微鏡下對(duì)大鼠(小鼠有對(duì)應(yīng)的型號(hào))的手術(shù)操作和觀察實(shí)驗(yàn)使用。我們還可以提供核磁共振兼容型號(hào),供核磁環(huán)境中使用。
標(biāo)準(zhǔn)型大鼠頭部固定器:
小鼠腦室顯微觀察固定器
型號(hào):Y-AM-200
還可以加配跑輪,在小鼠運(yùn)行狀態(tài)下配合雙光子顯微鏡對(duì)腦室進(jìn)行成像和觀察:
型號(hào):Y-AM-210
小動(dòng)物腦立體定位儀部分參考文獻(xiàn):1. Albéri, L., Lintas, A., Kretz, R., Schwaller, B., & Villa, A. E. (2013). The calcium-binding protein parvalbumin modulates the firing 1 properties of the reticular thalamic nucleus bursting neurons. Journal of neurophysiology, 109(11), 2827-2841.2. Sonati, T., Reimann, R. R., Falsig, J., Baral, P. K., O’Connor, T., Hornemann, S., Aguzzi, A. (2013). The toxicity of antiprion antibodies is mediated by the flexible tail of the prion protein. Nature, 501(7465), 102-106.3. Ali, I., O’Brien, P., Kumar, G., Zheng, T., Jones, N. C., Pinault, D., O’Brien, T. J. (2013). Enduring Effects of Early Life Stress on Firing Patterns of Hippocampal and Thalamocortical Neurons in Rats: Implications for Limbic Epilepsy. PLOS ONE, 8(6), e66962.4. Bell, L. A., Bell, K. A., & McQuiston, A. R. (2013). Synaptic Muscarinic Response Types in Hippocampal CA1 Interneurons Depend on Different Levels of Presynaptic Activity and Different Muscarinic Receptor Subtypes. Neuropharmacology.5. Bolzoni, F., B?czyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.6. Bolzoni, F., B?czyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.7. Babaei, P., Tehrani, B. S., & Alizadeh, A. (2013). Effect of BDNF and adipose derived stem cells transplantation on cognitive deficit in Alzheimer model of rats. Journal of Behavioral and Brain Science, 3, 156-161.8. Gilmartin, M. R., Miyawaki, H., Helmstetter, F. J., & Diba, K. (2013). Prefrontal Activity Links Nonoverlapping Events in Memory. The Journal of Neuroscience, 33(26), 10910-10914.9. Feng, L., Sametsky, E. A., Gusev, A. G., & Uteshev, V. V. (2012). Responsiveness to nicotine of neurons of the caudal nucleus of the solitary tract correlates with the neuronal projection target. Journal of Neurophysiology, 108(7), 1884-1894.10. Clarner, T., Diederichs, F., Berger, K., Denecke, B., Gan, L., Van der Valk, P., Kipp, M. (2012). Myelin debris regulates inflammatory responses in an experimental demyelination animal model and multiple sclerosis lesions. Glia, 60(10), 1468-1480.11. Girardet, C., Bonnet, M. S., Jdir, R., Sadoud, M., Thirion, S., Tardivel, C., Troadec, J. D. (2011). Central inflammation and sickness-like behavior induced by the food contaminant deoxynivalenol: A PGE2-independent mechanism.Toxicological Sciences, 124(1), 179-191.12. Hru?ka-Plocháň, M., Juhas, S., Juhasova, J., Galik, J., Miyanohara, A., Marsala, M., Motlik, J. (2010). A27 Expression of the human mutant huntingtin in minipig striatum induced formation of EM48+ inclusions in the neuronal nuclei, cytoplasm and processes. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.13. Brooks, S., Jones, L., & Dunnett, S. B. (2010). A29 Frontostriatal pathology in the (C57BL/6J) YAC128 mouse uncovered by the operant delayed alternation task. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A10.14. Yu, L., Metzger, S., Clemens, L. E., Ehrismann, J., Ott, T., Gu, X., Nguyen, H. P. (2010). A28 Accumulation and aggregation of human mutant huntingtin and neuron atrophy in BAC-HD transgenic rat. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.15. Baxa, M., Juhas, S., Pavlok, A., Vodicka, P., Juhasova, J., Hru?ka-Plocháň, M., Motlik, J. (2010). A26 Transgenic miniature pig as an animal model for Huntington’s disease. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A8-A9.
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